使用冷冻共聚焦显微镜定位活性循环核孔复合物

核孔复合体（NPC）是连接真核细胞核外膜和内膜的大的蛋白质组合体。NPC由几百个核孔蛋白（NUP）组合而成，这些核孔蛋白形成一个中心通道，使分子能够选择性地进行核质运输：RNA和核糖体蛋白质从细胞核运输，而在细胞质中翻译的核蛋白质、信号分子、脂质等则穿梭到细胞核中。
为了更好地理解NPC的结构-功能关系以及它们的生物发生和转换的调节，以最高的分辨率在细胞内部环境下研究它们的结构至关重要。图1显示了核膜冷冻电子断层照片的组分分割图[2]。断层照片显示，蛋白酶体与NPC结合，“在细胞核和细胞质之间的通道上建立了蛋白质降解枢纽”（Albert，S.等人，PNAS，2017年12月）。这清楚地显示了冷冻电子断层扫描（cryo ET）提供有关细胞结构和分子社会学的见解的方式。但是，如何用冷冻ET选择性地检查发生频率低的罕见特定细胞事件，例如经历自噬的NPC？

冷冻ET是一种专用的透射电子显微镜技术，该技术采集一系列倾斜图像，并重建观察区域的三维体积（图2）。随着EM硬件和软件的最新进展，可以实现亚纳米级的分辨率。为了使样品尽可能接近原生状态，应将其快速冷冻，以避免破坏性的冰晶形成。产生这种无定形冰的过程称为玻璃化。

只有厚度低于300nm的标本才能通过冷冻电子断层扫描直接评估。较厚的样品，例如用于NPC分析的酵母细胞核，必须通过铣削过程进行打薄。专用双光束显微镜包括扫描电子显微镜和聚焦镓离子束（冷冻 FIB-SEM），用于烧蚀不需要的材料（图3）。

在铣削过程中，去除感兴趣区域上方和下方的材料，以产生200–300nm厚度的薄片。通过FIB研磨，之前无法检测的厚细胞标本部分现在可以用于冷冻ET。

为了获得特定细胞部位（如正在经历自噬的NPC）的断层照片，必须在FIB研磨和冷冻ET期间确定感兴趣的结构。由于在铣削之前或铣削过程中，大多数结构在SEM中无法清晰识别，因此需要一种在冷冻条件下可视化和定位感兴趣分子的方法。
为了解决该问题，冷冻荧光显微镜是必不可少的，例如使用THUNDER Imager EM cryo CLEM。使用基因编码的荧光标记，可以可视化细胞中的特定靶点，并识别和标记感兴趣的结构。接着，可以在后续的EM步骤中检索图像和xy坐标（图4）。

当然，显微镜硬件必须始终保持样品玻璃化。现代宽场显微镜系统使用非常灵敏的摄像头，甚至可以检测微弱表达的蛋白质。此外，通过应用最新的实时去除非焦面信号技术技术，可以解决宽场系统固有的难题，如离焦模糊。
然而，仅检索感兴趣结构的xy坐标是不够的，z坐标也是必要的，以尽可能地使-靶结构包含在产生的FIB薄片中。然而，在宽场显微镜中，沿光轴的分辨率是有限的。
为了提高z分辨率，照理说下一步该选择共聚焦。中间聚焦平面上的针孔会阻挡离焦光线，从而提高对比度和分辨率，尤其是沿z轴的对比度和分辨率（有关共焦原理的更多信息）。

在下文中，描述了在3D冷冻共聚焦显微镜中识别荧光目标结构的工作流程，以及如何在冷冻FIB-SEM中检索荧光目标结构，目的是以更可靠的方式将其保留在最终FIB薄片中，以便在冷冻TEM中进行进一步研究。

为了评估冷冻EM网格和样本的质量，先创建一张相机概览图像。使用透射或反射显微模式，可以看到载网碳膜是否完整（图5）。

同时，可以判断有关细胞及其相对于网格方格的位置的信息。在随后的EM步骤中，只能评估网格方格中心附近的目的细胞。为了改善细胞的定位，可以在将细胞接种到载网碳膜上之前应用微排布技术[3]。 
在下文中，基于未发表的图像（德国海德堡EMBL的Herman Fung和Julia Mahamid提供）和《核孔的在细胞内的原位结构及其转换的快照》中的数据[1]，详细解释了3D冷冻靶向过程。
有关载网碳膜完整性的信息，以及荧光样品在网格方格内合适的位置，有助于选择合适的FIB研磨位置（图6）。

在为FIB铣削选择相关位置后，在这些位置沿光轴创建一系列荧光图像以获得3D信息。与普通宽场系统相比，要是想提高z方向的分辨率，共聚焦显微镜是首选方法。通过激光逐点扫描样品，只记录荧光发射的聚焦信息。然后，将在不同z位置记录的2D图像组合成3D堆栈（图7）。

显微镜系统的轴向分辨率主要取决于所用物镜的开启角度（所谓的数值孔径）。由于商品化冷冻显微镜为方便使用者而使用空气物镜（不需要浸入，可能会影响样品的玻璃化状态），因此实际分辨率有限。xy的典型分辨率为200 nm，z的分辨率约为800 nm。
为了能够正确定位感兴趣的细胞位置，可以将校准珠子作为参考结构应用于样品，以便在3D中对齐和关联荧光和EM图像[4]。
典型的珠子尺寸为1µm，完全呈球形，这使其中心坐标能够进行亚衍射拟合。通过SEM中的背散射电子，可以更清晰地观察到含有金属的微珠，从而将它们与大小相似的冰晶区分开来。优先选择荧光发射光不同于实际目标结构的荧光发射光的珠子，以便能够更好地区分（图8）。

由于基准点在LM和SEM中都可见，因此它们的坐标可用于在两种模式之间转换旋转、平移和缩放等参数。然后，可以将共聚焦显微镜中标记的靶坐标转换为FIB铣削过程，以增加获得FIB薄片中具有感兴趣结构的概率。
然而，用于精确3D定位的商业软件解决方案尚未开发，但基于上述出版物（3D Correlation Toolbox），有一个开源解决方案可用。
使用3D Correlation Toolbox，可以加载共聚焦图像数据，标记靶和校准珠子，并自动确定其中心坐标。然后将定义的坐标标记投射到FIB图像上，以定义铣削的xyz坐标（图9）。 

为了将靶区域研磨成适当薄的体积，感兴趣结构的上方和下方各设定一个铣削窗口，如荧光信号投射到FIB图像上所示（图9）。然后施加镓离子束，并削除相应窗口中的材料。可以在一个EM网格上创建多个薄片，从而提高工作流的效率。

为了以分子分辨率获得样品的结构信息，使用冷冻透射电子显微镜对冷冻样品薄片进行成像。通过在薄片的SEM和TEM视图之间进行配准，可以根据薄片中包含的目标荧光信号确定倾斜序列采集区域。然后将成像的倾斜序列进行计算组合，以重建细胞内部的三维体积。通过对许多同类单个蛋白的结构信息进行平均（亚层析平均），可以获得更好的大分子解析结构。在图10中，图9所示的下薄片由冷冻ET成像。断层照片的分割结果显示了核膜与靶NUP位置。 

本文表明，冷冻共聚焦显微镜是冷冻工作流程中的一个重要组成部分，用于评估EM载网上玻璃化样品的质量和目标结构分布。在冷冻条件下记录的高分辨率共聚焦数据使科学家能够在3D荧光下定位感兴趣结构。3D体积图像可作为光电关联的参考，以检索FIB-SEM中的目标结构进行铣削，随后在冷冻TEM中进行电子断层扫描，以获得目标结构在其原生细胞环境中的高分辨率图像。

本人要感谢Julia Mahamid博士、Kar Ho Herman Fung博士为本文提供的图片和反馈，以及整个Mahamid团队，尤其是Xiaojie Zhang博士和Jenia Zagory博士，感谢他们对冷冻共焦应用的持续支持和富有成效的讨论。