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使用钙指示剂 Fura2 的宽场钙成像

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在真核细胞中,Ca2+是信号转导通路中最广泛使用的第二信使之一。细胞内的 Ca2+水平通常保持较低,因为 Ca2+常常与磷酸化和羧酸化化合物形成不溶性复合物。通常,细胞质中的 Ca2+浓度在 100 nM 的范围内。作为对刺激的反应,Ca2+可以从外部介质或内部储存释放,以提高 Ca2+浓度。

由于 Ca2+不能在活细胞中直接可视化,因此可以通过荧光 Ca2+指示剂间接成像。

Ca2+ 染料

离子敏感染料是能够可逆结合特定离子的荧光分子。这些染料对离子浓度的变化非常敏感,且能实时通过荧光强度的增强或降低直接反映这些变化。离子与染料结合的亲和力的一个测量指标是解离常数 (Kd)。钙离子 (Ca2+) 的结合亲和力越低,Kd (Ca2+) 就越高。离子敏感染料主要分为两大类:1. 单波长染料,如 Fluo3 和 Calcium Green,适用于非比率测量。发射的荧光光强与游离离子浓度成正比增加。2. 双波长染料用于比率测量。这些指示剂也可以分为两组:

双发射离子指示剂:
这些染料在一个波长下被激发,并在结合特定离子时显示其发射光谱的变化。这个组别中一个著名且常用的指示剂是 Indo1。

双激发离子指示剂:
这些染料在两个不同的波长下被激发。发射的荧光光强度根据离子浓度的变化而变化。Fura2 是最常用的比率钙离子指示剂之一。

Fura2

Fura2 的未结合形式在 380 nm 处被激发,而结合形式在 340 nm 处被激发。发射的光在大约 510 nm 处被检测。随着钙离子浓度的增加,340 nm 处的荧光强度增加,而未结合形式在 387 nm 处的荧光强度则减少。有一些技术可以将荧光钙离子指示剂引入细胞,例如酯加载、微注射、化学加载技术或膜片钳玻璃管扩散。

有关不同钙离子指示剂、染料处理、细胞标记和细胞加载的更多信息,请参阅《分子探针手册》和 Takahashi 等人 (参见参考文献)。

比例测量的好处
通过比率方法可以避免由于染料分布不均、染料泄漏、光漂白和细胞厚度不均造成的误差。在典型的实验中,当你检测 Ca2+随时间的变化时,必须进行校准。校准可以在体外或体内进行。对于体内校准,测量最大和最小 Ca2+浓度的比率。这些值可以在同一实验中获得。为了获得最大量的结合 Ca2+指示剂,你可以添加离子载体如 Ionomycin 或 Bromo-A2318 来平衡 Ca2+浓度。要获得最小的 Ca2+浓度,你可以应用 EGTA 缓冲溶液来螯合所有的 Ca2+

徕卡系统配置

系统必须配备外置滤光片转轮和 EL6000 光源。外置滤光片转轮包含用于 Fura2 在 340 nm 和 387 nm 的特殊激发滤光片。此外,您还需要相应的滤光块,包括一个分色镜和一个发射带通滤光片,确保510nm的发射波长可以被检测。

了解更多关于如何设置宽场钙成像实验的信息

详细信息:

  1. 成像实验条件的设置
  2. 定义您的时间序列实验
  3. 荧光强度比
  4. 根据 Grynkiewicz 计算钙浓度

你可以在这里找到:

宽场应用信函第01号:使用钙指示剂 Fura 2进行宽场钙成像

了解更多关于比率成像的信息

参考文献

  1. Grynkiewicz G, Poenie M, Tsien RY: A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. J. Biol. Chem. 260 (1985) 3440–3450.
  2. Takahashi A, Camacho P, Lechleiter JD, Herman B: Measurement of Intracellular Calcium. Physiological Rev 79 (1999) 1089.
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