介绍
成功的冷冻固定即玻璃化,是将水从液态转化为非晶态,而不产生冰晶。冰晶成核与温度和压力有关(请参见以下图表)。该过程与冷却速率相关,因此冷冻固定是一个时间依赖性过程。冷却速率取决于水的热力学性质、样品厚度以及样品表面的热量流失速率。
Moor和Riehle[1]首先提出了高压冷冻生物样品的构想。于1985年,高压冷冻装置成功商品化。尽管目前高压冷冻仪设计各不相同,但都能以在20 ms内对样品进行同步加压与冷却,并具有很高的重复率。
高压冷冻的新维度
基于Leunissen和Yi[3]发现的自增压快速冷冻原理,徕卡显微系统开发了一种新技术。该技术利用密封样品载具内,液体水在冷却过程中的膨胀趋势,从而在内部产生压力,因而无须使用外部增压系统。这种压力能够在密封样品载体内形成透明且低密度冰。为了达到所需压力(2,010 bar),使冰的熔点降低到251 K(Kanno等人[2]),样品载具内60%的水须转化为低密度冰。
以物理学的视角观察
相较于液态水,低密度冰的形成会导致体积膨胀。数值模拟表明,冻结过程从载体壁向中心发展,该过程会产生强烈弯曲冰锋。制冷剂浸透速度越高,该效应就愈加显著。当冰锋最平坦时,含有低密度冰的部分和充分冷冻或玻璃态的部分之间分离地最好。这可以通过在徕卡EM SPF程序界面内,根据不同样品调整冻结参数来实现。在制冷剂浸透过程中,管内的冰锋始终在致冷剂表面以上,该冰锋的距离取决于浸透速度。
图5:感兴趣细胞内的荧光量子点:实时跟踪感兴趣细胞内包含荧光量子点的结构,每秒一帧拍摄图像。此处展示了该电影序列中相隔5秒的静止画面。最后一张图像也是该序列的最后一张(因此时间为0秒)。此时,将快速装载器从光镜载物台插入到RTS中,并冷冻样品。
图6:感兴趣细胞的电子显微镜图像(左),放大图(右):右侧电镜图像为左侧感兴趣细胞中方框区域的放大图。箭头指示在结构内部的量子点。将左图中的“C形”结构与图3的最后一张图像进行比较,可以观察到相似的“C形”结构。这里需要注意的是,电镜图像样品厚度为70 nm,而荧光图像则约为1 μm厚。
应用——冷冻电子显微镜玻璃化切片(CEMOVIS)
切片样品是用Leica HPM100,在铜管中冷冻的酵母细胞制备的。将细胞团与pH 6.5 MES/葡聚糖缓冲液混合,使得最终 MES 浓度为50 mM,葡聚糖浓度为20%。
样品在配置有微操作器的Leica EM UC7/EM FC7冷冻超薄切片机上,在-140℃下,制备50 nm厚切片,并将切片收集于琼脂膜载网上。
使用配有4 K Gatan CCD照相机的Tecnai Polara 300KeV(荷兰FEI公司)电子透射显微镜对切片成像。图像放大倍率为23 K,在成像时,采用6 um的散焦距离拍摄断层图像和8 um的散焦距离拍摄投影图像,并采用930 mm的相机长度拍摄衍射图像。左侧的图像是用IMOD软件包(Kremer等人 [4])的图像处理软件,对FEI软件采集的10张断层图像进行重构的结果。
参考文献
- Moor H, Riehle U.: Snap-freezing under high pressure: A new fixation technique for freeze-etching. Proc. Fourth Europ. Reg. Conf. Elect. Microsc. 2: 33–34 (1968).
- Kanno H, Speedy RJ, Angell CA: Supercooling of water to –92 °C under pressure. Science 189: 880–881 (1975); doi: 10.1126/science.189.4206.880.
- Leunissen JL, Yi H: Self-pressurized rapid freezing (SPRF): a novel cryofixation method for specimen preparation in electron microscopy. J. Microsc. 235: 25–35 (2009).
- Kremer JR, Mastronarde DN and McIntosh JR: Computer visualization of three-dimensional image data using IMOD. Journal of structural biology 116: 71–76 (1996).